Contrôle de l'organisation et des forces dans la matière active par le biais de frontières définies optiquement

[ad_1]

  • 1.

    Marchetti, M.C. et al. Hydrodynamique de la matière active molle. Rev. Mod. Phys. 851143-1189 (2013).

  • 2

    Dumont, S. & Prakash, M. Mécanique émergente des structures biologiques. Mol. Biol. Cellule 25, 3461 à 3465 (2014).

  • 3

    Needleman, D. & Dogic, Z. La matière active à l'interface entre la science des matériaux et la biologie cellulaire. Nat. Rev. Mater. 217048 (2017).

  • 4

    Nédélec, F. J., T., T., Maggs, A. C. & Leibler, S. Auto-organisation des microtubules et des moteurs. La nature 389305-308 (1997).

  • 5

    Surrey, T., Nédélec, F., Leibler, S. et Karsenti, E. Propriétés physiques déterminant l'auto-organisation des moteurs et des microtubules. Science 2921167-1171 (2001).

  • 6

    Sanchez, T., Chen, D. T., N. DeCamp, S. J., Heymann, M. et Dogic, Z. Mouvement spontané dans une matière active montée hiérarchiquement. La nature 491431–434 (2012).

  • 7.

    DeCamp, S.J., Redner, S.S., Baskaran, A., Hagan, M.F. & Dogic, Z. Ordre d'orientation des défauts mobiles dans la nématologie active. Nat. Mater. 141110 (2015).

  • 8

    Wu, K.-T. et al. Passage d'écoulements turbulents à cohérents dans des fluides actifs tridimensionnels confinés. Science 355eaal1979 (2017).

  • 9

    Bricard, A., Caussin, J.-B., Desreumaux, N., Dauchot, O. et Bartolo, D. Emergence d'un mouvement dirigé macroscopique dans des populations de colloïdes mobiles. La nature 50395–98 (2013).

  • dix.

    Nédélec, F., Surrey, T. et Maggs, A. C. Concentration dynamique des moteurs dans des réseaux de microtubules. Phys. Rev. Lett. 863192-3195 (2001).

  • 11

    Lee, H. Y. & Kardar, M. Équations macroscopiques pour la formation de motifs dans des mélanges de microtubules et de moteurs moléculaires. Phys. Rev. E 64056113 (2001).

  • 12

    Keber, F.C. et al. Topologie et dynamique des vésicules nématiques actives. Science 3451135-1139 (2014).

  • 13

    Aoyama, S., Shimoike, M. & Hiratsuka, Y. Dispositif optique auto-organisé entraîné par des protéines motrices. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 11016408–16413 (2013).

  • 14

    Guntas, G. et al. Ingénierie d'un dimère induit par la lumière amélioré (iLID) pour contrôler la localisation et l'activité des protéines de signalisation. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 112112–117 (2015).

  • 15

    Schuppler, M., Keber, F.C., Kröger, M. & Bausch, A. R. Boundaries dirigent la contraction de gels actifs. Nat. Commun. 713120 (2016).

  • 16

    Belmonte, J. M., Leptin, M. & Nédélec, F. Une théorie qui prédit le comportement de réseaux cytosquelettiques désordonnés. Mol. Syst. Biol. 13941 (2017).

  • 17

    Foster, P. J., Fürthauer, S., Shelley, M. J. & Needleman, D. J. Contraction active des réseaux de microtubules. eLife 4e10837 (2015).

  • 18

    Good, M. C., Vahey, M. D., Skandarajah, A., Fletcher, D. A. et Heald, R. Le volume cytoplasmique module la taille du fuseau au cours de l'embryogenèse. Science 342856 à 860 (2013).

  • 19

    Weiner, O. D., Marganski, W.A., Wu, L.F., Altschuler, S.J. & Kirschner, M.W. Un générateur d'ondes à base d'actine organise la motilité cellulaire. PLoS Biol. 5e221 (2007).

  • 20

    Gardel, M. L., Schneider, C., Aratyn-Schaus, Y. et Waterman, C. M. Intégration mécanique de l'actine et dynamique d'adhésion dans la migration cellulaire. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 26315 à 333 (2010).

  • 21

    Theurkauf, W. E. Flux cytoplasmique prématuré dépendant de microtubules dans des ovocytes mutants de cappuccino et de spire. Science 2652093-2096 (1994).

  • 22

    Ganguly, S., Williams, L.S., Palacios, I.M. & Goldstein, R.E. Flux cytoplasmique dans Drosophile Les ovocytes varient avec l'activité de la kinésine et sont en corrélation avec l'architecture du cytosquelette des microtubules. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 10915109-15114 (2012).

  • 23

    Goldstein, R.E., Tuval, I. et van de Meent, J.-W. Microfluidique du flux cytoplasmique et ses implications pour le transport intracellulaire. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 105, 3663 à 3667 (2008).

  • 24

    Drescher, K., Dunkel, J., Cisneros, L. H., Ganguly, S. et Goldstein, R. E. Dynamique des fluides et bruit dans la diffusion cellule – cellule et surface – cellule. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 10810940-10945 (2011).

  • 25

    Drescher, K., R. Goldstein, N. Michel, Polin, M. et Tuval, I. Mesure directe du champ d'écoulement autour des microorganismes nageurs. Phys. Rev. Lett. 105168101 (2010).

  • 26

    He, B., K. Doubrovinski, Polyakov, O. & Wieschaus, E. La constriction apicale entraîne l'écoulement hydrodynamique à l'échelle du tissu pour réguler l'élongation cellulaire. La nature 508392–396 (2014).

  • 27

    Shinar, T., Mana, M., Piano, F. et Shelley, M. J. Un modèle de mouvement à base de microtubules induit par le cytoplasme dans les cellules unicellulaires. Caenorhabditis elegans embryon. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 10810508-10513 (2011).

  • 28

    Mittasch, M. et al. Les perturbations non invasives du flux intracellulaire révèlent les principes physiques de l'organisation cellulaire. Nat. Cellule biol. 20344–351 (2018).

  • [ad_2]