[ad_1]
Munns, R. & Tester, M. Mécanismes de tolérance à la salinité. Annu. Rev. Plant Biol. 59, 651–681 (2008).
Ismail, A. M. & Horie, T. Génomique, physiologie et approches de sélection moléculaire pour améliorer la tolérance au sel. Annu. Rev. Plant Biol. 68, 405 à 434 (2017).
Yang, Y. & Guo, Y. Élucider les mécanismes moléculaires à l'origine des réponses du stress au sel chez les plantes. Nouveau Phytol. 217523-539 (2018).
Deinlein, U. et al. Mécanismes de tolérance au sel des plantes. Trends Plant Sci. 19371–379 (2014).
Zhu, J. K. Signalisation du stress abiotique et réponses chez les plantes. Cellule 167, 313 à 324 (2016).
Julkowska, M. M. & Testerink, C. Accord de signalisation de la plante et de la croissance pour survivre au sel. Trends Plant Sci. 20, 586-594 (2015).
Kudla, J. et al. Progrès et défis actuels en matière de signalisation du calcium. Nouveau Phytol. 218414–431 (2018).
Edel, K. H., E. Marchadier, C. Brownlee, J. Kudla et A. Hetherington. L'évolution de la signalisation à base de calcium chez les plantes. Curr. Biol. 27, R667 – R679 (2017).
Knight, M. R., Campbell, A. K., Smith, S. M. et Trewavas, A. J. L'équorine de plante transgénique décrit les effets du toucher et du choc par le froid et des éliciteurs sur le calcium cytoplasmique. La nature 352524-526 (1991).
Knight, H., Trewavas, A. J. et Knight, M. R. Signalisation du calcium dans Arabidopsis thaliana réagir à la sécheresse et à la salinité. Plante j. 121067-1078 (1997).
Hedrich, R. Ion canaux in plants. Physiol. Tour. 92, 1777-1811 (2012).
Roper, S. D. & Chaudhari, N. Bourgeons du goût: cellules, signaux et synapses. Nat. Rev. Neurosci. 18, 485–497 (2017).
Chandrashekar, J. et al. Les cellules et la représentation périphérique du goût de sodium chez la souris. La nature 464297-301 (2010).
Zhang, Y. V., Ni, J. et Montell, C. La base moléculaire de l’attrait du goût du sel codant dans Drosophile. Science 3401334-1338 (2013).
Oka, Y., Butnaru, M., Von Buchholtz, L., Ryba, N. J.P. et Zuker, C.S. Une forte concentration de sel recrute des voies du goût aversives. La nature 494472–475 (2013).
Chatzigeorgiou, M., Bang, S., Hwang, S. W. et Schafer, W. R. tmc-1 code pour un canal sensible au sodium requis pour la chimiosensation du sel dans C. elegans. La nature 494, 95–99 (2013).
Yuan, F. et al. OSCA1 médie le Ca évoqué par le stress osmotique2+ augmente vital pour l'osmosensing dans Arabidopsis. La nature 514, 367 à 371 (2014).
Choi, W. G., Hilleary, R., Swanson, S. J., Kim, S. H. et Gilroy, S.. Rapide, signalisation électrique et au calcium sur de longues distances chez les plantes. Annu. Rev. Plant Biol. 67, 287-307 (2016).
Martí, M. C., Stancombe, M. A. & Webb, A. A. R. Ca libre intracellulaire spécifique au type de cellule et de type de stimulus2+ signaux dans Arabidopsis. Plante Physiol. 163625–634 (2013).
Hedrich, R., Salvador-Recatalà, V. et Dreyer, I. Câblage électrique et communication à distance entre installations. Trends Plant Sci. 21376–387 (2016).
Choi, W.G., Toyota, M., Kim, S.H., Hilleary, R. & Gilroy, S.Car.2+ les ondes sont associées à une signalisation rapide de la racine à la pousse sur de longues distances chez les plantes. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 1116497–6502 (2014).
Evans, M. J., Choi, W.G., Gilroy, S. & Morris, R. J. Une onde calcique assistée par ROS qui dépend du canal AtRBOHD NADPH oxydase et du canal cationique TPC1 propage la réponse systémique au stress salin. Plante Physiol. 171, 1771-1784 (2016).
Rennie, E.A. et al. Identification d'une α-glucuronosyltransférase sphingolipide essentielle à la fonction du pollen dans Arabidopsis. Cellule de plante 26, 3314 à 3325 (2014).
Rennie, E.A. et al. Trois membres du Arabidopsis les glycosyltransférases de la famille 8 sont les xylanes glucuronosyltransférases. Plante Physiol. 1591408-1417 (2012).
Nikolovski, N., Shliaha, P., Gatto, L., Dupree, P. et Lilley, K. S. Quantification de protéines sans étiquette pour la localisation et l'abondance de protéines de Golgi de plantes. Plante Physiol. 1661033-1043 (2014).
Tartaglio, V. et al. La glycosylation d’inositol phosphorylcéramide sphingolipides est nécessaire à la croissance et à la reproduction normales Arabidopsis. Plante j. 89, 278-290 (2017).
Gronnier, J., Germain, V., Gouguet, P., Cacas, J.-L. & Mongrand, S. GIPC: phosphoséramides de glycosylinositol, les principaux sphingolipides sur Terre. Signal de l'usine. Comportement. 11, e1152438 (2016).
Markham, J. E., Lynch, D. V., Napier, J. A., Dunn, T. M. et Cahoon, E. B. Sphingolipides végétaux: la fonction suit la forme. Curr. Opin. Plante biol. 16, 350–357 (2013).
Hannun, Y. A. et Obeid, L. M. Sphingolipides et leur métabolisme dans la physiologie et la maladie. Nat. Rev. Mol. Cellule biol. 19, 175-191 (2018).
Cacas, J. L. et al. Revisiter les lipides membranaires plasmatiques chez le tabac: un point central sur les sphingolipides. Plante Physiol. 170, 367–384 (2016).
Ledeen, R. W. & Wu, G. La vie multi-tâches du ganglioside GM1, un véritable factotum de la nature. Tendances Biochem. Sci. 40, 407 à 418 (2015).
Schnaar, R. L., Gerardy-Schahn, R. & Hildebrandt, H. Acides sialiques dans le cerveau: gangliosides et acide polysialique dans le développement, la stabilité, la maladie et la régénération du système nerveux. Physiol. Tour. 94461-518 (2014).
Green, W. N. & Andersen, O. S. Charges superficielles et fonction des canaux ioniques. Annu. Rev. Physiol. 53341-359 (1991).
Liu, K.H. et al. Découverte de la signalisation nitrate-CPK-NLP dans les réseaux centraux de croissance des éléments nutritifs. La nature 545, 311–316 (2017).
Ho, C. H., Lin, S. H., Hu, H. C. et Tsay, Y. F. CHL1 fonctionne comme un capteur de nitrate chez les plantes. Cellule 1381184-1194 (2009).
Xu, J. et al. Une protéine kinase, interagissant avec deux protéines analogues à la calcineurine B, régule le K+ transporteur AKT1 dans Arabidopsis. Cellule 1251347-1360 (2006).
McLaughlin, S. & Murray, D. Organisation des phosphoinositides dans les membranes plasmiques par électrostatique des protéines. La nature 438, 605 à 611 (2005).
Balla, T. Phosphoinositides: lipides minuscules à impact géant sur la régulation cellulaire. Physiol. Tour. 931019-1137 (2013).
Hirschi, M. et al. Structure en microscopie cryogénique du canal TRPML3 perméable au calcium lysosomal. La nature 550411–414 (2017).
Gao, Y., Cao, E., Julius, D. et Cheng, Y. Les structures de TRPV1 dans le nanodisque révèlent les mécanismes d'action des ligands et des lipides. La nature 534, 347–351 (2016).
Zipfel, C. & Oldroyd, G. E. D. Signalisation végétale en symbiose et immunité. La nature 543328–336 (2017).
Hamilton, E.S., Schlegel, A.M. et Haswell, E.S. Unis dans la diversité: canaux ioniques mécanosensibles dans les plantes. Annu. Rev. Plant Biol. 66, 113–137 (2015).
Choi, J. et al. Identification d'un récepteur végétal pour l'ATP extracellulaire. Science 343290–294 (2014).
Ranf, S. et al. Une kinase de récepteur de domaine S de lectine médie la détection de lipopolysaccharide dans Arabidopsis thaliana. Nat. Immunol. 16, 426 à 433 (2015).
Charpentier, M. et al. Les canaux dépendant de nucléotides cycliques localisés dans le nucléaire interviennent dans les oscillations symbiotiques du calcium. Science 3521102-1105 (2016).
Dindas, J. et al. L'afflux d'auxine par les racines des cheveux induite par AUX1 régit la SCFTIR1 / AFB-type Ca2+ signalisation. Nat. Commun. 91174 (2018).
Mousavi, S.A., Chauvin, A., Pascaud, F., Kellenberger, S. et Farmer, E.E. LIQUANT AU RÉCEPTEUR DE GLUTAMATE les gènes interviennent dans la signalisation de la plaie feuille à feuille. La nature 500422–426 (2013).
Ortiz-Ramírez, C. et al. Les canaux similaires au récepteur du glutamine sont essentiels pour la chimiotaxie et la reproduction dans les mousses. La nature 54991–95 (2017).
Murthy, S.E., Dubin, A.E. & Patapoutian, A. Piezos prospèrent sous la pression: canaux ioniques activés mécaniquement pour la santé et la maladie. Nat. Rev. Mol. Cellule biol. 18771–783 (2017).
Lenarčič, T. et al. Les sphingolipides spécifiques à la plante Eudicot déterminent la sélectivité de l'hôte pour les cytolysines microbiennes de la PNL. Science 3581431-1434 (2017).
Monshausen, G. B., Messerli, M. A. et Gilroy, S. L'imagerie de l'indicateur Yellow Cameleon 3.6 révèle que les élévations du taux de Ca cytosolique2+ suivre les augmentations oscillantes de la croissance des poils absorbants de Arabidopsis. Plante Physiol. 1471690-1698 (2008).
Feldmann, K. A. Mutagenèse par insertion d'ADN-T chez Arabidopsis – spectre de mutation. Plante j. 171–82 (1991).
Weigel, D. et al. Activation du marquage dans Arabidopsis. Plante Physiol. 1221003-1013 (2000).
Clough, S.J. & Bent, A.F. Floral dip: une méthode simplifiée pour Agrobacteriumtransformation médiée de Arabidopsis thaliana. Plante j. 16735-743 (1998).
Schubert, D. et al. Faire taire Arabidopsis Transformants d'ADN-T: le rôle prédominant d'un mécanisme de détection d'ARN spécifique d'un gène par rapport aux effets de position. Cellule de plante 162561-2572 (2004).
Li, J. et al. BAK1, un Arabidopsis La protéine kinase, semblable au récepteur LRR, interagit avec BRI1 et module la signalisation des brassinostéroïdes. Cellule 110213-222 (2002).
Pei, Z.-M. et al. Les canaux calciques activés par le peroxyde d'hydrogène induisent la signalisation par l'acide abscisique dans les cellules de garde. La nature 406731 à 734 (2000).
Tang, R.H. et al. Couplage du Ca cytosolique diurne2+ oscillations vers le CAS-IP3 voie dans Arabidopsis. Science 3151423-1426 (2007).
Lahner, B. et al. Profil à l'échelle génomique des éléments nutritifs et des oligo-éléments dans Arabidopsis thaliana. Nat. Biotechnol. 211215-1221 (2003).
Baxter, I. et al. Un cline côtier en accumulation de sodium dans Arabidopsis thaliana est entraîné par la variation naturelle du transporteur de sodium AtHKT1; 1. PLoS Genet. 6e1001193 (2010).
Song, W. Y. et al. La tolérance à l'arsenic dans Arabidopsis est véhiculé par deux transporteurs de phytochélatine de type ABCC. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 10721187-21192 (2010).
Qiu, Q. S., Guo, Y., Dietrich, M. A., Schumaker, K. S. et Zhu, J. K. Régulation de SOS1, une membrane plasmique Na+/ H+ échangeur dans Arabidopsis thaliana, par SOS2 et SOS3. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 998436 à 8441 (2002).
Johansson, F., Olbe, M., Sommarin, M. et Larsson, C. Brij 58, un polyoxyéthylène acyl éther, crée des vésicules à membrane de côté uniforme. Un nouvel outil pour obtenir des vésicules de la membrane plasmique à l'intérieur (la face cytoplasmique). Plante j. 7165-173 (1995).
Bradford, M. M. Méthode rapide et sensible pour la quantification de quantités de protéines en microgrammes utilisant le principe de liaison protéine-colorant. Anal. Biochimie. 72248-254 (1976).
Blumwald, E. & Poole, R. J. Antiport dans des vésicules de tonoplaste isolées provenant de tissus de Beta vulgaris. Plante Physiol. 78163-167 (1985).
Schwacke, R. et al. ARAMEMNON, une nouvelle base de données pour Arabidopsis protéines membranaires intégrales. Plante Physiol. 131, 16-26 (2003).
Karimi, M., Inzé, D. & Depicker, A. GATEWAY, vecteurs de Agrobacteriumtransformation végétale Trends Plant Sci. 7, 193-195 (2002).
Nelson, B. K., Cai, X. & Nebenführ, A. Un ensemble multicolore de in vivo organites marqueurs pour les études de co-localisation dans Arabidopsis et d'autres plantes. Plante j. 511126-1136 (2007).
Hooper, C. M., Castleden, I. R., Tanz, S. K., Aryamanesh, N. & Millar, A. H. SUBA4: le centre interactif d'analyse de données pour Arabidopsis localisations protéiques subcellulaires. Acides Nucléiques Rés. 45, D1064 à D1074 (2017).
Heard, W., Sklenář, J., Tomé, D.F.A., Robatzek, S. & Jones, A.M.E. Identification des protéines régulatrices et protéiques des voies endosomales et sécrétoires dans Arabidopsis thaliana par dissection protéomique. Mol. Cellule. Protéomique 141796-1813 (2015).
Nikolovski, N. et al. Les glycosyltransférases putatives et d'autres protéines de l'appareil de Golgi végétales sont révélées par la protéomique LOPIT. Plante Physiol. 1601037-1051 (2012).
Jefferson, R. A., Kavanagh, T. A. et Bevan, M. W. GUS. Fusion: la β-glucuronidase en tant que marqueur de fusion de gènes sensible et polyvalent chez les plantes supérieures. EMBO J. 63901-3907 (1987).
Buré, C. et al. Criblage rapide de sphingolipides de plantes hautement glycosylés par spectrométrie de masse en tandem. Commun rapide. Spectrom de masse. 253131-3145 (2011).
Wang, P. et al. Surface potentielle de la membrane cellulaire (ψ
0) joue un rôle dominant dans la phytotoxicité du cuivre et de l’arséniate. Plante Physiol. 1482134-2133 (2008).
Delgado, A. V., González-Caballero, F., Hunter, R. J., Koopal, L. K. et Lyklema, J. Mesure et interprétation de phénomènes électrocinétiques. J. Colloid Interface Sci. 309, 194-224 (2007).
Kinraide, T. B. et Wang, P. Densité de charge en surface des membranes de cellules végétales (σ): tentative de résolution de valeurs contradictoires pour σ intrinsèque. J. Exp. Bot. 612507-2518 (2010).
Yoo, S. D., Cho, Y. H. et Sheen, J. Arabidopsis protoplastes mésophylles: un système cellulaire polyvalent pour l'analyse de l'expression génique transitoire. Nat. Protocoles 21565-1572 (2007).
Endo, M., Shimizu, H. et Araki, T. Isolement rapide et simple de cellules vasculaires, épidermiques et mésophylles à partir de tissus de feuilles végétales. Nat. Protocoles 111388–1395 (2016).
Welsch, M.E. et al. Inhibiteurs multivalents pan-RAS à petites molécules. Cellule 168, 878–889 (2017).
Menting, J. G. et al. Comment l'insuline s'engage dans son site de liaison principal sur le récepteur de l'insuline. La nature 493, 241–245 (2013).
Coscia, F. et al. La protéomique à plusieurs niveaux identifie CT45 en tant que médiateur de chimiosensibilité et cible d'immunothérapie dans le cancer de l'ovaire. Cellule 175159–170 (2018).
Chen, Y. N. P. et al. L'inhibition allostérique de SHP2 phosphatase inhibe les cancers provoqués par les récepteurs tyrosine kinases. La nature 535, 148-152 (2016).
Johnson, R.A., Manley, O.M., Spuches, A.M. et Grossoehme, N. E.. Disséquer les données ITC des ions métalliques se liant à des ligands et à des protéines. Biochim. Biophys. Acta. 1860892–901 (2016).
Machaidze, G., Ziegler, A. et Seelig, J. Liaison spécifique de Ro 09-0198 (cinnamycine) à la phosphatidyléthanolamine: analyse thermodynamique. Biochimie 411965-1971 (2002).
Katoh, K. & Standley, D. M. Logiciel MAFFT d'alignement pour séquences multiples version 7: amélioration des performances et de la convivialité. Mol. Biol. Evol. 30772–780 (2013).
Price, M. N., Dehal, P. S. & Arkin, A. P. FastTree: calcul de grands arbres d'évolution minimale avec des profils au lieu d'une matrice de distance. Mol. Biol. Evol. 261641-1650 (2009).
Yin, Y., Chen, H., Hahn, M. G., D. Mohnen et Xu, Y. Evolution et fonction de la famille des glycosyltransférases liées à la synthèse de la paroi cellulaire végétale 8. Plante Physiol. 1531729-1746 (2010).
[ad_2]