La persistance de Salmonella favorise la propagation des plasmides de résistance aux antibiotiques dans l'intestin

[ad_1]

  • 1.

    Parisi, A. et al. Résultats de santé de multirésistante Salmonella infections dans les pays à revenu élevé: revue systématique et méta-analyse. Pathog d'origine alimentaire. Dis. 15428–436 (2018).

  • 2

    Wright, G. D. L'antibiotique résistif: le lien entre la diversité chimique et génétique. Nat. Rev. Microbiol. 5, 175-186 (2007).

  • 3

    Brauner, A., Fridman, O., Gefen, O. et Balaban, N. Q. Différenciation entre résistance, tolérance et persistance à un traitement antibiotique. Nat. Rev. Microbiol. 14, 320–330 (2016).

  • 4

    Fridman, O., Goldberg, A., Ronin, I., Shoresh, N. et Balaban, N. Q. L'optimisation du temps de latence sous-tend la tolérance aux antibiotiques dans les populations bactériennes évoluées. La nature 513418–421 (2014).

  • 5

    Claudi, B. et al. Variation phénotypique de Salmonella dans les tissus de l'hôte retarde l'éradication par chimiothérapie antimicrobienne. Cellule 158, 722 à 733 (2014).

  • 6

    Helaine, S. et al. Internalisation de Salmonella par les macrophages induit la formation de persistantes non répétées. Science 343204-208 (2014).

  • 7.

    Kaiser, P. et al. Les cellules dendritiques des ganglions lymphatiques Cecum hébergent des bactéries à croissance lente, phénotypiquement tolérantes au traitement antibiotique. PLoS Biol. 12, e1001793 (2014).

  • 8

    Dolowschiak, T. et al. L’IFN-γ empêche la guérison de l’inflammation des muqueuses pendant le traitement antibiotique contre Salmonella infection intestinale. Microbe hôte cellulaire 20, 238–249 (2016).

  • 9

    Balaban, N. Q. et al. Définitions et lignes directrices pour la recherche sur la persistance des antibiotiques. Nat. Rev. Microbiol. 17441–448 (2019).

  • dix.

    Balaban, N. Q., Merrin, J., Chait, R., Kowalik, L. & Leibler, S. La persistance bactérienne en tant que commutateur phénotypique. Science 3051622-1625 (2004).

  • 11

    Levin-Reisman, I. et al. La tolérance aux antibiotiques facilite l'évolution de la résistance. Science 355, 826 à 830 (2017).

  • 12

    Wotzka, S. Y. et al. Stabilité du microbiote chez des individus en bonne santé après une dose unique de lactulose – étude contrôlée randomisée. PLoS ONE 13e0206214 (2018).

  • 13

    Coque, T. M., Baquero, F. et Canton, R. Prévalence croissante des entérobactéries productrices de BLSE en Europe. Eurosurveillance 1319044 (2008).

  • 14

    Crump, J. A., M. Sjölund-Karlsson, Gordon, M. A. et Parry, C. M. Épidémiologie, présentation clinique, diagnostic de laboratoire, résistance aux antimicrobiens et gestion antimicrobienne des infections invasives Salmonella les infections. Clin. Microbiol. Tour. 28901–937 (2015).

  • 15

    Wilcock, B.P., Armstrong, C.H. et Olander, H.J. L'importance du sérotype dans les caractéristiques cliniques et pathologiques de la salmonellose porcine d'origine naturelle. Pouvez. J. Comp. Med. 4080-88 (1976).

  • 16

    Wood, R. L., Pospischil, A. et Rose, R. Répartition des cas persistants Salmonella typhimurium infection dans les organes internes du porc. Un m. J. Vet. Res. 501015-1021 (1989).

  • 17

    San Román, B. et al. Relation entre l'infection à Salmonella, l'excrétion et la sérologie chez les porcs d'engraissement dans les zones à prévalence faible à modérée. Zoonoses santé publique 65, 481–489 (2018).

  • 18

    Tenaillon, O., Skurnik, D., Picard, B. et Denamur, E. La génétique des populations de commensal Escherichia coli. Nat. Rev. Microbiol. 8207-217 (2010).

  • 19

    Apperloo-Renkema, H. Z., Van der Waaij, B.D. et Van der Waaij, D.Détermination de la résistance à la colonisation du tube digestif par biotypage d'entérobactéries. Épidémiol. Infecter. 105355-361 (1990).

  • 20

    Stecher, B. et al. L'inflammation de l'intestin peut stimuler le transfert de gène horizontal entre les entérobactéries pathogènes et commensales. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 1091269-1274 (2012).

  • 21

    Diard, M. et al. L’inflammation stimule le transfert de bactériophages entre Salmonella spp. Science 355, 1211-1215 (2017).

  • 22

    Moor, K. et al. L'IgA à haute avidité protège l'intestin en enchaînant les bactéries en croissance. La nature 544498–502 (2017).

  • 23

    D. Monack, D. Bouley, D. Falkow et S. Salmonella typhimurium persiste dans les macrophages dans les ganglions mésentériques de patients infectés de manière chronique Nramp1
    + / + souris et peut être réactivé par neutralisation de l'IFNγ. J. Exp. Med. 199, 231–241 (2004).

  • 24

    Diard, M. et al. Le traitement antibiotique sélectionne la virulence coopérative de Salmonella Typhimurium. Curr. Biol. 24, 2000-2005 (2014).

  • 25

    Sampei, G. et al. Séquence génomique complète du plasmide R64 du groupe d’incompatibilités I1. Plasmide 6492-103 (2010).

  • 26

    Hensel, M. et al. Identification simultanée de gènes de virulence bactérienne par sélection négative. Science 269, 400-403 (1995).

  • 27

    Stapels, D.A.C. et al. Salmonella persister saper les défenses immunitaires de l'hôte pendant le traitement antibiotique. Science 362, 1156-1160 (2018).

  • 28

    Moor, K. et al. Le traitement à l'acide peracétique génère de puissants vaccins oraux inactivés à partir d'un large éventail d'espèces bactériennes cultivables. De face. Immunol. 7, 34 (2016).

  • 29

    Fauvart, M., De Groote, V.N. & Michiels, J. Rôle des cellules persistantes dans les infections chroniques: pertinence clinique et perspectives des traitements anti-persistants. J. Med. Microbiol. 60699–709 (2011).

  • 30

    Roberts, M.E. & Stewart, P.S. Modélisation de la protection contre les agents antimicrobiens dans les biofilms par la formation de cellules persistantes. Microbiologie 151, 75–80 (2005).

  • 31.

    Knodler, L. A. et al. L’inflammasome non activable de la caspase-4 / caspase-11 active les défenses épithéliales contre les bactéries pathogènes entériques. Microbe hôte cellulaire 16, 249 à 256 (2014).

  • 32

    Sellin, M.E. et al. L’inflammasome intrinsèque à l’épithélium-NAIP / NLRC4 conduit l’expulsion des entérocytes infectés à Salmonella réplication dans la muqueuse intestinale. Microbe hôte cellulaire 16, 237-248 (2014).

  • 33

    Defraine, V., Fauvart, M. et Michiels, J. Lutte contre la persistance bactérienne: stratégies et traitements anti-persistant actuels et émergents. Drug Resist. Updat. 38, 12-26 (2018).

  • 34

    Grant, A.J. et al. Modélisation de la dynamique spatio-temporelle intra-hôte de la maladie bactérienne invasive. PLoS Biol. 6, e74 (2008).

  • 35

    Datsenko, K. A. & Wanner, B. L. Inactivation en une étape des gènes chromosomiques chez Escherichia coli K-12 utilisant des produits de PCR. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 97, 6640 à 6645 (2000).

  • 36

    Sternberg, N. L. et Maurer, R. Transduction généralisée médiée par un bactériophage dans Escherichia coli et Salmonella typhimurium. Méthodes Enzymol. 204, 18–43 (1991).

  • 37

    Stecher, B. et al. Chronique Salmonella enterica colite et cholangite provoquées par le sérovar Typhimurium chez des patients prétraités à la streptomycine Nramp1
    + / + des souris Infecter. Immun. 745047–5057 (2006).

  • 38

    Barthel, M. et al. Le prétraitement des souris avec de la streptomycine fournit un Salmonella enterica modèle de colite du sérovar Typhimurium permettant l’analyse à la fois de l’agent pathogène et de l’hôte. Infecter. Immun. 712839–2858 (2003).

  • 39

    Johansson, M.E. & Hansson, G.C. Conservation du mucus dans les coupes histologiques, immunomarquage de mucines dans un tissu fixé et localisation de bactéries avec FISH. Méthodes Mol. Biol. 842, 229-235 (2012).

  • 40

    Marjoram, P., Molitor, J., Plagnol, V. & Tavare, chaîne de S. Markov Monte Carlo sans vraisemblance. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 10015324-15328 (2003).

  • 41

    Zankari, E. et al. Identification des gènes de résistance aux antimicrobiens acquis. J. Antimicrob. Chemother. 672640-2644 (2012).

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