[ad_1]
Osawa, M., Hanada, K., H. Hamada et H. Nakauchi, H. Reconstitution lymphohématopoïétique à long terme par une seule cellule souche hématopoïétique CD34-faible. Science 273, 242–245 (1996).
Copelan, E. A. Greffe de cellules souches hématopoïétiques. N. Engl. J. Med. 354, 1813-1826 (2006).
Morrison, S. J. & Scadden, D. T. La niche de la moelle osseuse pour les cellules souches hématopoïétiques. La nature 505, 327 à 334 (2014).
Boulais, P. E. & Frenette, P. S. Donner un sens aux niches de cellules souches hématopoïétiques. Du sang 1252621 à 2629 (2015).
Yamazaki, S. et al. Les cellules de Schwann non myélinisantes maintiennent l'hibernation des cellules souches hématopoïétiques dans la niche de la moelle osseuse. Cellule 1471146-1158 (2011).
Kumar, S. & Geiger, H. HSC Biologie de niche et expansion du HSC ex vivo. Trends Mol. Med. 23799–819 (2017).
Eaves, C. J. Cellules souches hématopoïétiques: concepts, définitions et nouvelle réalité. Du sang 1252605 à 2613 (2015).
Ieyasu, A. et al. Un système de culture à base de protéines entièrement recombinantes identifie spécifiquement les facteurs de maintien des cellules souches hématopoïétiques. Rapports sur les cellules souches 8, 500–508 (2017).
Coutu, D. L., Kokkaliaris, K. D., Kunz, L. & Schroeder, T. Carte tridimensionnelle des cellules et des molécules d'os non hématopoïétique et de moelle osseuse. Nat. Biotechnol. 35, 1202-1210 (2017).
L'expression de Gekas, C. & Graf, T. CD41 marque les cellules souches hématopoïétiques chez les adultes à tendance myéloïde et augmente avec l'âge. Du sang 1214463–4472 (2013).
Umemoto, T. et al. Integrin-αvβ3 régule la maintenance des cellules souches hématopoïétiques induite par la thrombopoïétine. Du sang 119, 83–94 (2012).
Csaszar, E. et al. Expansion rapide des cellules souches hématopoïétiques humaines par le contrôle automatisé de la signalisation de rétroaction inhibitrice. Cellule souche cellulaire dix, 218–229 (2012).
Kawasaki, T. et Kawai, voies de signalisation du récepteur de type Toll. De face. Immunol. 5461 (2014).
Netea, M.G., Van der Graaf, C., Van der Meer, J.W. & Kullberg, B.J. Reconnaissance des agents pathogènes fongiques par les récepteurs de type Toll. EUR. J. Clin. Microbiol. Infecter. Dis. 23672–676 (2004).
Loures, F. V. et al. La signalisation du récepteur Toll-like 4 conduit à une infection fongique sévère associée à une immunité proinflammatoire accrue et à une altération de l'expansion des lymphocytes T régulateurs. Infecter. Immun. 78, 1078-1088 (2010).
Wilkinson, C., Morita, M., Nakauchi, H. et Yamazaki, S. La déplétion d'acides aminés à chaîne ramifiée conditionne la moelle osseuse pour la greffe de cellules souches hématopoïétiques en évitant une toxicité liée au déséquilibre des acides aminés. Exp. Hématol. 63, 12–16.e1 (2018).
Taya, Y. et al. L'épuisement de la valine alimentaire permet une greffe de cellules souches hématopoïétiques de souris non myéloablative. Science 3541152-1155 (2016).
Hernandez-Segura, A., Nehme, J. & Demaria, M. Caractéristiques de la sénescence cellulaire. Trends Cell Biol. 28436-453 (2018).
de Haan, G. & Lazare, S. S. Vieillissement des cellules souches hématopoïétiques. Du sang 131479–487 (2018).
Flach, J. et al. Le stress de réplication est un facteur puissant du déclin fonctionnel du vieillissement des cellules souches hématopoïétiques. La nature 512, 198-202 (2014).
Kane, M. T. & Bavister, B. D. Un milieu de culture sans protéines contenant de l'alcool polyvinylique, des vitamines et des acides aminés soutient le développement d'embryons de hamster à huit cellules jusqu'à l'éclosion de blastocystes. J. Exp. Zool. 247183-187 (1988).
Wiles, M. V. & Johansson, B. M. Développement de cellules souches embryonnaires dans un milieu chimiquement défini. Exp. Cell Res. 247, 241-248 (1999).
Hu, Y. & Smyth, G. K. ELDA: analyse de dilution limitante extrême pour comparer des populations appauvries et enrichies dans des essais sur cellules souches et autres. J. Immunol. Les méthodes 347, 70–78 (2009).
Yamamoto, R. et al. L'analyse clonale dévoile des progéniteurs à lignée auto-renouvelée générés directement à partir de cellules souches hématopoïétiques. Cellule 1541112-1126 (2013).
Yamamoto, R. et al. L'analyse clonale à grande échelle résout le vieillissement du compartiment des cellules souches hématopoïétiques de la souris. Cellule souche cellulaire 22, 600-607.e4 (2018).
Bhattacharya, D., Rossi, D., Bryder, D. et Weissman, I. L. La greffe de cellules souches hématopoïétiques purifiées de niches rares corrige des carences lymphoïdes graves sans conditionnement de l'hôte. J. Exp. Med. 203, 73–85 (2006).
Shimoto, M., Sugiyama, T. et Nagasawa, T. De nombreuses niches pour cellules souches hématopoïétiques restent vides pendant l'homéostasie. Du sang 1292124-2131 (2017).
Seita, J. et al. Lnk régule négativement l'auto-renouvellement des cellules souches hématopoïétiques en modifiant la transduction du signal médiée par la thrombopoïétine. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 1042349-2354 (2007).
Wilkinson, A. C. et al. Expansion de cellules souches hématopoïétiques de souris ex vivo à l'aide d'alcool polyvinylique. Protoc. Exch. (2019).
[ad_2]